Metoder for å oppdage immunfunksjonen til dyr

In vitro-testmetoder for sent hår-hårallergiske reaksjoner Hudtesting og induksjon av kontaktallergi er to vanlige metoder for å oppdage sent hår-fremkallende allergiske reaksjoner (DTH).

I hudtester ble det indusert en re-respons på antigener som hadde gjort pasienten sensitiv, og kontaktallergi var evnen til å teste mottakerens evne til å være sensitiv for stoffer som aldri hadde vært eksponert. 1. Hudtest med hudtestdiagnose DTH, vanlig brukte antigener har TB-bakterier i rene TB-bakterier, derivater av virus, PPD, etc., mumpida. menneskelige tester i underarmen huden injeksjon av en liten mengde løselig antigen, 24 til 48 små, måle størrelsen på røde og hovne harde knuter, hard knute diameter større enn 10 mm anses positivt. Den viser at forsøkspersonen har en viss grad av cellulær immunitet mot patogenet, hvis hudtesten ikke reagerer, kan bruke en høyere konsentrasjon av antigen gjentatt test, hvis fortsatt ingen respons er negativ, er det nødvendig å utelukke hudtesten teknisk feil, kan også være at forsøkspersonen aldri har vært eksponert for dette antigenet, kan også skyldes celleimmunfunksjonssvikt, eller på grunn av cellulær funksjonssvikt,

eller ikke-reaktiv på grunn av alvorlige infeksjoner (meslinger, kronisk diffus tuberkulose). 2. Kontaktallergier bruker ofte lavmolekylære forbindelser som dinitrol-klorbenzen (DNCB)-indusert kontaktallergi. Forbindelser binder seg til hudproteiner for å indusere DTH-reaksjoner. I dyreforsøk ser huden positiv ut hvis huden virker positiv etter 7 til 10 dagers stimulering etter første gang DNCB er påført huden.

Dette eksperimentet brukes ikke lenger av mennesker.

In vitro-deteksjonsmetode for celleimmunitet In vitro-deteksjon av antall og funksjon av lymfocytter, lettere å samle blodprøver, først og fremst behov for å isolere eller rense lymfocytter, vanligvis ved bruk av glutalyson-panfotonisk glutamin med en andel på 1,077 lymfocytter stratifiseringsvæske, når blodet duftifiserte blodet overlapper røde lymfocytter på toppen celler (1.092), polymorfe kjernefysiske hvite blodceller (primært 1.090), proporsjonene av lymfocytter (1.070) er forskjellige og separert fra hverandre. Lymfocytter og monocytter danner et tynt lag ved krysset mellom plasma og stratifisering.

Del forsiktig dette tynne laget av celler, hvorav lymfocytter sto for 80 %, mononukleose sto for 20 %, lymfocytter sto for 80 %, B-celler sto for 4 % til 10 %, som ikke-DT, ikke-B-celler. ⑴ E-krans: menneskelig T-celleoverflate har SRBC-reseptor (CD2) kan binde seg til SRBC for å danne en rosering-lignende struktur, RBM-suspensjonen og SRBC isolert av lagdelt væske blandet i et balansert saltvann som inneholder serum, dyrket ved 37 grader C 5 til 10 minutter legg 4 grader C i blodcellene over natten, ta 4 grader C blod ca. 70 % til 80 % av lymfocyttene danner kranser, eller T-celler.

Foreløpig har denne metoden blitt brukt til å isolere T-celler uten å måtte gjøre T-celletelling. (2) Telle T-celler med monoklonale antistoffer: det humane PBM er delt inn i tre like deler, pre-antistoffene til mus anti-human CD3, CD4 og CD8 kombineres med cellene, og deretter brukes det andre antistoffet til kanin anti-muse-IgG som er merket med sta-direkte immunofluoreringsresultater ved sta-direkte immunisering. fluorescensmikroskop eller flowcytometer testresultater, i PBM cd3 antistoffer fargede fluorescerende celler kalt CD3-pluss celler, eller totale T-celler. Normale mennesker i PBM T-celler sto for 70 % til 80 %. Summen av CD4-pluss-celler og CD8-celler hos normale mennesker bør være i samsvar med antall CD3-celler. Forholdet mellom CD4-pluss-celler og CD8-celler er omtrent 2/1 for normale mennesker, mens forholdet mellom AIDS-pasienter er mindre enn 1,7.